寄生線蟲遺傳多樣性的分子研究成果探析論文
生物多樣性包括遺傳多樣性、 物種多樣性、 生態(tài)系統(tǒng)多樣性和景觀多樣性。 在生物多樣性這四個層次中， 遺傳多樣性是核心內(nèi)容和生物進化的基礎(chǔ)。 遺傳多樣性是指同一物種內(nèi)不同種群間或同一種群內(nèi)不同個體間的遺傳變異的總和[1], 在 種群間或種群內(nèi)主要表現(xiàn)為分子、 細胞和個體三個水平上的遺傳變異[2]. 通 常來說 , 遺傳變異程度的高低是反映遺傳多樣性大小的最直接表達形式。 在自然界中， 種群是生物進化的基本單位， 種群遺傳結(jié)構(gòu)的差異也反映著遺傳多樣性的程度， 所以遺傳變異的大小和種群遺傳結(jié)構(gòu)的差異同時決定著一個物種的進化潛力和對不良環(huán)境的抵抗能力[3].
遺傳多樣性的研究有著重要的價值， 可以為物種的進化提供理論支持， 加深人們對生物起源的認識， 同時為保護現(xiàn)有資源提供背景資料[4]. 對 于寄生線蟲來說， 每年由寄生線蟲引起的疾病， 給家畜的健康和畜牧業(yè)的發(fā)展帶來嚴重的危害， 這使得人們的研究不斷深入， 從最初對寄生線蟲的形態(tài)學(xué)、系統(tǒng)分類學(xué)和生態(tài)學(xué)特征等方面的描述， 逐漸發(fā)展到遺傳特性、 分子進化以及基因功能等方面的研究[ 5].
寄生線蟲種群遺傳學(xué)的研究可以在種群間或種群內(nèi)進行， 遺傳多樣性依賴于堿基的突變率、 種群的有效大小和種群的遷移率等[6]. 遺傳多樣性的研究對了解寄生線蟲的流行方式、 抗藥性等位基因的擴散以及疾病的防控有著重要的意義。
1寄生線蟲遺傳多樣性的分子研究方法
遺傳多樣性的研究方法從傳統(tǒng)的形態(tài)學(xué)標記、染色體標記和生化標記逐步發(fā)展到DNA分子標記。DNA是遺傳物質(zhì)的載體 , 遺 傳信息就是DNA的 堿基排序， 直接對DNA堿基序列的分析和比較是揭示遺傳多樣性的最理想方法。 與其他標記相比， DNA分子標記不受發(fā)育階段和組織特異性的影響， 多態(tài)信息含量豐富， 現(xiàn)已被廣泛應(yīng)用到系統(tǒng)發(fā)育、 基因定位和遺傳育種等研究中[7]. 此 外 , DNA分 子標記應(yīng)用于研究種群遺傳多樣性時， 不需要大量的表型遺傳基礎(chǔ)作為背景資料， 為加快寄生線蟲的分子生物學(xué)研究、 診斷分析和潛在疫苗的特征描述提供了技術(shù)保障。
1.1 限 制 性 片段 長 度 多 態(tài) 性 （ restriction fragmentlength polymorphism, RFLP） RFLP 標記是以分子雜交為核心的第1代分子標記技術(shù)。 其基本原理是基因組DNA上的特定核苷酸序列可被限制性內(nèi)切酶識別并切割， 然后與探針結(jié)合進行Southern雜交，通過放射顯影的方法觀察所獲得的特異性RFLP圖譜[8]. 這 種分子標記的出現(xiàn) , 使得種群遺傳學(xué)的發(fā)展向前跨越了一大步， 但是同位素標記的使用存在一定的放射性污染， 對于不同發(fā)育階段的個體差異分析， 敏感性不高。隨著PCR技術(shù)的建立， RFLP常與PCR技術(shù)相結(jié)合應(yīng)用于種群遺傳多樣性的分析中， 既克服了上述方法的局限性， 也省去了酶切和雜交等繁瑣的操作過程， 并且僅需少量的DNA模板[9]. PCR-RFLP的.原理是將擴增的PCR產(chǎn)物使用特異性的限制性內(nèi)切酶切割成大小不同的片段， 再利用凝膠電泳分辨其差異性。
1.2 隨 機 擴 增 多 態(tài) 性 DNA （ random amplifiedpolymorphic DNA, RAPD） RAPD 技 術(shù) 最 早 出 現(xiàn)于20世紀90年代， 是以PCR為核心的第2代分子標記技術(shù)。 使用該分子標記時不需要了解研究對象的DNA序 列信息 , 利用10個核苷酸的隨機寡核苷酸序列作為引物， 對基因組DNA進行PCR擴增， 根據(jù)凝膠電泳顯示的若干大小不一片段分析該物種的多態(tài)性[ 10,11]. 應(yīng) 用 RAPD 分子標記時所需 DNA 的 量少 ,操作簡易， 檢測速度快， 可以檢測出RFLP標記不能檢測的重復(fù)序列區(qū)， 填補RFLP圖譜的空缺， 但是該分子標記重復(fù)性和特異性比較差[12].
1.3 聚 合 酶 鏈式反應(yīng)-單 鏈構(gòu) 象 多 態(tài) 性 （polymerasechain reaction-single strand conformation polymorphism,PCR-SSCP） PCR-SSCP 標 記 是 將 PCR 和 DNA 單 鏈構(gòu)象多態(tài)性結(jié)合的第2代分子標記技術(shù)。 其原理是將 擴 增 得 到 的 DNA 雙 鏈 產(chǎn) 物 變 性 處 理 成 單 鏈 的DNA, 在非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳中 , 根據(jù)電泳遷移率的不同， 觀察單鏈DNA構(gòu)象的差異， 反映出物種的多態(tài)性[ 13]. 傳 統(tǒng)的 SSCP 分 析采用平板凝膠電泳， 這不僅費時費力， 還不能滿足大量篩選突變基因的需要。 有研究者將毛細管電泳與SSCP結(jié)合替代了平板凝膠電泳[14], CE-SSCP標 記具有分離效率高、 分析速度快、 樣品用量少等特點， 20世紀80年代， CE-SSCP標記得到廣泛應(yīng)用。
1.4 擴 增 性 長 度 片段 多 態(tài) 性 （ amplified fragmentlength polymorphism, AFLP） AFLP標 記也是第2代分子標記技術(shù)的一種， 與RFLP標記不同的是該標記需要兩種限制性內(nèi)切酶切割基因組DNA, 酶切片段的5′端在T4連接酶的作用下與帶有兩種內(nèi)切酶黏性末端的接頭序列連接， 接頭序列是由核心序列和內(nèi)切酶識別序列兩部分組成， 接頭序列與引物3′端選擇性堿基識別， 對特異性片段進行預(yù)擴增和選擇性擴增， 在變性的聚丙烯酰胺凝膠電泳上檢測PCR產(chǎn)物， 尋找多態(tài)性片段[15]. AFLP 標 記兼具了 RFLP和RAPD兩種標記的優(yōu)點， 但是操作比較復(fù)雜， 花費較高。
1.5 微衛(wèi)星DNA （microsatellite DNA, SSR） 微 衛(wèi)星DNA 又 被 稱 為 簡 單 重 復(fù) 序 列 （ simple sequencerepeat, SSR） 或者短串聯(lián)重復(fù)序列 （ short tandemrepeat, STR） , 廣泛且隨機地分布在真核生物的基因組中[16], 是 由1~6個核苷酸為重復(fù)單元組成的串聯(lián)重復(fù)序列。 微衛(wèi)星DNA呈現(xiàn)出的高度多態(tài)性以自身重復(fù)單位數(shù)的差異為基礎(chǔ)， 在DNA復(fù)制過程中出現(xiàn)滑鏈現(xiàn)象， 使重復(fù)序列之間發(fā)生了插入和缺失等變化， 出現(xiàn)了大量的不同的等位基因從而引起了微衛(wèi)星DNA的高度多態(tài)性[17,18]. 微 衛(wèi)星DNA 是 由核心序列與其兩端的側(cè)翼序列組成的， 根據(jù)兩端保守的側(cè)翼序列設(shè)計PCR反應(yīng)的引物， 擴增出微衛(wèi)星片段， 用于遺傳多樣性的分析。 目前， 微衛(wèi)星DNA被廣泛應(yīng)用于種群遺傳結(jié)構(gòu)分析、 構(gòu)建遺傳圖譜、 親子鑒定和QTL定位等研究中。
1.6 線 粒 體DNA （mitochondrial DNA） 寄 生線蟲的線粒體基因組與后生動物的線粒體基因組相似，也呈環(huán)形， 基因組大小在12~26 kb. 目前大約有110 種線蟲的線粒體基因組全部完 成測序和分析 .線粒體基因組包括12~13個編碼基因， 分別是煙酰胺脫氫酶亞單位1~6和4L基因、 細胞色素氧化酶亞單位1~3和b基因、 ATP酶亞單位6或8基因 [除旋毛蟲 （Trichinella spiralis） 外， 大部分線蟲的線粒體基因組不包括ATP酶亞單位8基因], 還包括tRNA基因和rRNA基因[19]. 線粒體基因組獨立存在于細胞核外， 與核基因組相比進化速率快， 有母系遺傳特征并且能夠穩(wěn)定遺傳[20], 常被應(yīng)用在種群遺傳學(xué)的研究中， 尤其是相對保守的cox1和nad4基因應(yīng)用廣泛。
1.7 DNA 分 子 標 記 方 法特 征 的 比較 DNA 分 子標記可以分為兩大類型， I型是與分子標記相關(guān)聯(lián)的基因的功能是已知的， II型是與分子標記相關(guān)聯(lián)的基因功能是未知的[21]. DNA分子標記被廣泛應(yīng)用于種群的遺傳學(xué)分析中， 每種標記都有自身的優(yōu)點和局限性， 常用的分子標記特點見表1.
2寄生線蟲遺傳多樣性的研究現(xiàn)狀
2.1 捻 轉(zhuǎn) 血 矛線 蟲 （ Haemonchus contortus） 線粒體DNA屬于核外基因， 并且具有進化速率快、 母系遺傳等優(yōu)點， 因此常被選作遺傳標記應(yīng)用于捻轉(zhuǎn)血矛線蟲遺傳多樣性的研究中。 國內(nèi)外均有報道，以線粒體nad4基因作為遺傳標記， 對寄生在牛羊體內(nèi)的捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的種群遺傳結(jié)構(gòu)進行分析， 包括美國、 希臘、 德國、 瑞典、 澳大利亞、 印度尼西亞、 柬埔寨、 馬來西亞、 也門、 巴西、 中國和巴基斯坦等地區(qū)[22-27]. 這些研究均表明 , 捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的遺傳變異大部分來自種群內(nèi)部。 其次， 從全球范圍來看， 來自距離相近的國家或同域的種群， 種群間基因流動高， 導(dǎo)致種群間遺傳分化程度不高； 而對于不同地理起源的種群來說， 受地理隔離的影響， 種群間基因流動有一定的阻礙， 使得種群間的遺傳分化程度相對較高。 而以同樣基因作為遺傳標記分析寄生在野生動物體內(nèi)的捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的種群遺傳結(jié)構(gòu)時， 發(fā)現(xiàn)種群內(nèi)部也表現(xiàn)出較高的遺傳變異[28].
國外研究者對捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的微衛(wèi)星DNA的結(jié)構(gòu)特點也進行了研究， 結(jié)果發(fā)現(xiàn)捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的微衛(wèi)星位點不屬于完美型， 但捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的微衛(wèi)星標記的多態(tài)性比較豐富， 可作為遺傳標記用于種群遺傳結(jié)構(gòu)分析[29,30]. 利 用8個 微衛(wèi)星位點分析捻轉(zhuǎn)血矛線蟲成蟲和3期幼蟲的遺傳多樣性， 結(jié)果表明，在對大量的幼蟲DNA樣品進行遺傳學(xué)研究以及實驗室株和野生株之間的遺傳關(guān)系分析上， 微衛(wèi)星標記是一種簡便而又快速的手段[31]. 以11個 微衛(wèi)星位點作為遺傳標記， 分析澳大利亞不同氣候和地理位置的捻轉(zhuǎn)血矛線蟲的種群遺傳結(jié)構(gòu)， 結(jié)果表明來自澳大利亞不同地理位置的種群表現(xiàn)出明顯的遺傳差異， 同時也觀察到蟲體表型上的差異[32].
2.2 毛 圓線 蟲 Grant等[33]在1994年借助RFLP分子雜交技術(shù)， 使用簡單非重復(fù)性的探針對蛇形毛圓線蟲 （Trichostrongylus colubriformis） 的種群間和種群內(nèi)的遺傳關(guān)系進行了分析， 同時比較了蛇形毛圓線蟲的實驗室株和野生株之間的遺傳差異。 研究發(fā)現(xiàn)實驗室株的多態(tài)性并不少于野生株， 說明在相對規(guī)模小的種群內(nèi)也能維持足夠的多態(tài)性。PCR-RFLP 標記也可應(yīng)用于寄生線蟲種類的鑒定， 利用該技術(shù)鑒別來自山羊、 綿羊、 牛和豬體內(nèi)的 24 種 毛 圓 線 蟲 , 對 核 糖 體 DNA 內(nèi) 轉(zhuǎn) 錄 間 隔 區(qū)（ITS） 的PCR-RFLP分 析結(jié)果表明 , ITS-1和ITS-2是鑒別寄生線蟲種類的特異性遺傳標記[34].以RAPD作為種類特異性的標記對毛圓線蟲進行鑒定， 但是這些寄生線蟲的種內(nèi)高度變異使得鑒定結(jié)果不可靠， 需要同時結(jié)合生態(tài)學(xué)和形態(tài)學(xué)一起進行種類上的鑒別[35].
2.3 肺線 蟲 利用線粒體 cox1 基因分析瑞典胎生肺線蟲 （Dictyocaulus viviparus） 的種群遺傳結(jié)構(gòu)，數(shù)據(jù)分析后共得到12個單倍體， 單倍型多態(tài)性和核苷酸多態(tài)性分別是0.160和0.002, 不同地理起源的12個單倍體聚類分析 沒有發(fā)現(xiàn)明顯的遺傳結(jié)構(gòu) , 分析結(jié)果表明牛肺線蟲的種群內(nèi)部遺傳差異較小， 并且種群間的基因流動也較低[36].利用AFLP標記對來自瑞典的胎生肺線蟲的8個野生株和1個實驗室株的種群遺傳結(jié)構(gòu)進行分析，結(jié)果顯示種群內(nèi)的雜合體較少， 這可能與種群的突變率和遷移率保持平衡有關(guān)。 從AFLP圖譜上可發(fā)現(xiàn)實驗室株與野生株的種群遺傳結(jié)構(gòu)有所不同。 將野生株和實驗室株作為一個整體時， 分析結(jié)果顯示有50%的變異發(fā)生在種群內(nèi)部。 而8個野生株單獨分析時， 發(fā)現(xiàn)有60%的變異發(fā)生在種群內(nèi)部[37].應(yīng)用mtDNA （cox3、 nad5、 rrnL、 trna） 和AFLP兩種分子標記對同樣的8個野生株和1個實驗室株進行種群遺傳結(jié)構(gòu)研究， 發(fā)現(xiàn)這8個野生株中至少存在3個亞種群結(jié)構(gòu)， 其中有1個占主導(dǎo)地位。 在這個占主導(dǎo)地位的種群中又分化出兩個較小的遺傳組群， 該分析結(jié)果意味著這些牛肺線蟲有著多重的來源[38].
2.4 環(huán) 背帶線 蟲 （Teladorsagia circumcincta） 使用線粒體nad4基因研究來自法國和摩洛哥的11個環(huán)背帶線蟲種群的遺傳結(jié)構(gòu)， 結(jié)果顯示所有的種群都呈現(xiàn)高度的核苷酸多態(tài)性， 在小規(guī)模的地理范圍內(nèi)（小于200 km） 種群沒有發(fā)生遺傳亞分化 , 在 大規(guī)模的地理范圍內(nèi)FST值比較顯著， 但種群之間的遺傳差異不明顯[39].由于環(huán)背帶線蟲的種群遺傳學(xué)信息較少， 限制了對藥物抗藥性的研究， Grillo等[40]在2006年通過環(huán)背帶線蟲的EST數(shù)據(jù)庫篩選了7個多態(tài)性豐富、 穩(wěn)定性好、 擴增效率高的微衛(wèi)星位點用于種群遺傳學(xué)的研究。 以5對微衛(wèi)星標記分析環(huán)背帶線蟲的9個野生株和3個實驗室株的種群內(nèi)和種群間的遺傳關(guān)系，結(jié)果顯示所有的種群均在種群內(nèi)部表現(xiàn)出了高度的遺傳變異。 對于來自英國不同地理起源的野生株和實驗室株的種群沒有檢測到遺傳差異； 而來自法國野生株的4個種群和來自新西蘭實驗室株的1個種群在種群間表現(xiàn)出明顯的遺傳差異。 最后分析結(jié)果表明寄生在山羊體內(nèi)的環(huán)背帶線蟲不是單一的蟲種，有可能存在隱藏種[41].
2.5 鉤 蟲 將 PCR-SSCP 標 記與 DNA 測 序相結(jié)合研究犬鉤蟲 （Ancylostoma caninum）、 十二指腸鉤蟲（ Ancylostoma duodenale） 和 美 洲 鉤 蟲 （ Necatoramericanus） 的群體遺傳結(jié)構(gòu) , 結(jié)果表明在犬鉤蟲和十二指腸鉤蟲中存在著亞種結(jié)構(gòu)， 來自中國和多哥的美洲鉤蟲有4個不同的核苷酸固定位點變異，暗示美洲鉤蟲是一個復(fù)雜的種群， 這些發(fā)現(xiàn)說明鉤蟲的種群遺傳學(xué)研究有著重要的流行病學(xué)意義[42 ].以線粒體cox1基因為遺傳標記， 對寄生在人、狗和貓體內(nèi)的鉤蟲的遺傳特征進行研究， 系統(tǒng)發(fā)育分析發(fā)現(xiàn)不同宿主體內(nèi)的鉤蟲分成兩個聚類群， 其中一簇包括寄生在人體內(nèi)的3個隔離株， 另一簇由寄生在人和動物體內(nèi)的19個隔離株組成。 進一步分析發(fā)現(xiàn)兩個聚類群的鉤蟲的核苷酸序列有5個堿基的差異， 這些發(fā)現(xiàn)意味著不同宿主體內(nèi)的鉤蟲可能存在相似的單倍型[43]. 以同樣的遺傳標記對寄生在澳洲海獅 （Neophoca cinerea） 體內(nèi)的鉤蟲進行種群遺傳結(jié)構(gòu)分析， 研究發(fā)現(xiàn)種群間基因流動高， 遺傳分化程度較低， 反駁了由于地理隔離阻礙了鉤蟲基因流動的假設(shè)[44].
2.6 鼠 類 圓 線 蟲 利用PCR-RFLP標記對來自英國和德國的鼠類圓線蟲 （Strongyloides ratti） （寄生在野生鼠體內(nèi)） 種群遺傳結(jié)構(gòu)進行分析， 分析表明來自宿主體內(nèi)不同個體間的差異為73.3%, 同一采樣地點不同種群間的差異為25.3%, 不同采樣地點之間的樣品遺傳差異很小， 為1.4%, 得到的數(shù)據(jù)說明鼠類圓線蟲的種群間存在著一定的基因流[45].
2.7 其 它 線 蟲 Dame 等[46 ]在1992年應(yīng)用線粒體標記分析奧斯特線蟲 （Ostertagia ostertagi） 的種群遺傳多樣性， 發(fā)現(xiàn)來自不同地理位置的種群間存在很高的基因流。 利用RAPD標記技術(shù)， 選擇10條隨機性引物擴增異小桿線蟲 （Heterorhabditis） 的基因組DNA,分析噬菌異小桿線蟲 （Heterorhabditis bacteriophora）（HP88 和E1）， 夏威夷異小桿線蟲 （H. hawaiiensis）（ MG-13） , H. hepialius （ Bodega Bay） , H. indicus（EMS-13和Coimbatore）， 大異小桿線蟲 （H. megidis）（HSH2和HO1）， H. zealandica和H. marelatus （OH10）等7種異小桿線蟲和不同隔離株之間的遺傳相似度及 差 異 關(guān) 系 . H. hawaiiensis MG-13、 H. indicus和H. zealandica這3種線蟲來自哥倫比亞 , EMS-13隔 離株 來 自 埃 及 , H . hepialius 來 自 加 利 福 尼 亞 ,H. marelatus來 自美國 . 結(jié)果表明同一種個體間平均相似百分比為96.25%, 比較異小桿線蟲 的3個 種時， 發(fā)現(xiàn)隔離株之間的平均相似百分比為83.8%,不同種之間的平均相似百分比為31.3%[47].
應(yīng)用PCR-SSCP標記和對線粒體cox1基因的部分片段測序兩種方法， 有學(xué)者分析了來自歐洲和亞洲不同地理起源， 寄生在貓、 狗和狐貍體內(nèi)的結(jié)膜吸允線蟲 （Thelazia callipaeda） 的種群遺傳結(jié)構(gòu)。 對歐洲37個個體 （寄生在狗、 狐貍和貓體內(nèi)） 的cox1基因序列進行分析， 發(fā)現(xiàn)有6個核苷酸位點沒有發(fā)生突變。 而對亞洲的13個個體 （寄生在狗體內(nèi)） 的cox1基因序列進行分析 , 發(fā) 現(xiàn)這6個核苷酸位點中5個位點發(fā)生了G→A轉(zhuǎn)換， 1個位點發(fā)生了C→T轉(zhuǎn)換。 PCR-SSCP標記的分析結(jié)果與線粒體cox1基因測序分析結(jié)果一致， 說明PCR-SSCP對于結(jié)膜吸允線蟲的種群遺傳學(xué)研究是一個很好的分子遺傳標記[48].
利用PCR-SSCP標記分析寄生在有袋類和嚙齒類動物體內(nèi)的毛細線蟲 （Capillaria sensulato） 的種群遺傳結(jié)構(gòu)， 結(jié)果表明來自同一宿主體內(nèi)的毛細線蟲沒有表現(xiàn)出明顯的遺傳差異， 并且在同一宿主體內(nèi)此類線蟲會寄生在1~3個不同的組織器官中， 但是來自不同宿主體內(nèi)的毛細線蟲則存在較明顯的遺傳差異， 提示可能由寄生宿主種類的特異性引起毛細線蟲的種群遺傳差異[49].
3結(jié)語
隨著分子生物學(xué)技術(shù)突飛猛進的發(fā)展， 對寄生線蟲的分子分類學(xué)、 分子進化學(xué)和種群遺傳學(xué)等方面取得了一些研究進展， 但對于寄生線蟲這個龐大的生物群體而言還存在很多的科學(xué)空白。 近些年來， 國內(nèi)開展了關(guān)于捻轉(zhuǎn)血矛線蟲[26]、 旋 毛蟲[50]、美洲鉤蟲[51]和弓首蛔蟲 （Toxocara）[52]等寄生線蟲種群遺傳學(xué)的研究， 這些研究將為進一步了解寄生線蟲的種群遺傳學(xué)特征提供良好的理論支持。 分子遺傳標記技術(shù)的發(fā)展對寄生線蟲新蟲種的分子鑒定和系統(tǒng)進化的研究起到了巨大的推動作用。 然而， 對于大多數(shù)寄生線蟲而言， 基因組和遺傳進化信息尚且未知， 這些資料的匱乏使得對寄生線蟲的宿主群的形成過程、 宿主的防御和選擇壓力以及寄生蟲藥物抗藥性形成的研究捉襟見肘， 不斷豐富寄生線蟲在基因組、 轉(zhuǎn)錄組、 蛋白組以及代謝組等方面的資料， 將會對研究其分子分類學(xué)、 群體遺傳學(xué)、 分子流行病學(xué)和寄生蟲病的防治提供重要的幫助。
參 考 文 獻
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